Stbl2電轉感受態(tài)細胞

Stbl2電轉感受態(tài)細胞

產品規(guī)格CAT#: BFNC86038-01(5×50ul)/BFNC86038-02(20×50ul)

Stbl2 Electroporation-Competent Cell                   50μl/支

pUC19 (control vector，10pg/μl):                                10μl

保存條件(保質期)：                                         -80℃（6個月）

基因型

F- mcrA Δ(mcrBC-hsdRMS-mrr) recA1 endA1 lon gyrA96 thi supE44 relA1 λ^-Δ(lac-proAB)

產品說明

Stbl2菌株來源于 JM109 E. coli strain，適合克隆不穩(wěn)定插入片段 (正向重復序列，逆轉錄病毒序列等)；mcrA突變和mcrBC-hsd RMS-mrr deletion 使該菌株更適于克隆甲基化的基因組序列；同時Stbl2也可用于慢病毒載體的構建。recA  1和endA1的突變有利于克隆DNA的穩(wěn)定和高純度質粒DNA的提取。不存在lacI^qZΔM15，不可用于藍、白斑篩選。

青旗生物生產的Stbl2電轉感受態(tài)細胞經特殊工藝制作，pUC19檢測轉化效率可達10¹⁰ cfu/μg DNA。

操作方法

1. 0.1 cm 電擊杯和杯蓋從儲存液中拿出倒置于干凈的吸水紙上5分鐘，待其瀝干水分，正置5分鐘，待乙醇揮發(fā)干凈立即插入冰中，壓實冰面，電極杯頂離冰面0.5 cm以方便蓋上杯蓋，冰中靜置5分鐘充分降溫。

2. 取-80℃保存的Stbl2電擊感受態(tài)細胞插入冰中5 分鐘，待其融化，加入目的DNA (質粒或連接產物)并用手bo打EP管底輕輕混勻，避免產生氣泡，立即插入冰中。

      A. 測定轉化效率使用1 μl 10 pg/μl的對照質粒 pUC19；

      B. 對于連接產物，大部分公司的T4連接酶反應體系或50度反應重組體系可與Stbl2電擊感受態(tài)混合后電擊轉化，無需進行DNA純化，但DNA濃度不能過高，DNA濃度不超過100 ng/μl，體積不超過5 μl/50 μl感受態(tài)。

      C. 對鹽濃度較高的DNA溶液或反應體系請用乙醇沉淀DNA后加入適量TE緩沖液 (10 mM Tris HCl, pH7.5; 1 mM EDTA)重懸，然后與Stbl2電擊感受態(tài)混合進行電擊轉化。

3. 用200 μl槍頭(用刀切除0.5cm槍尖)將感受態(tài)-DNA混合物快速移到電擊杯中，避免產生氣泡，蓋上杯蓋。

4. 啟動電轉儀，設置參數(shù)：C=25 μF，PC=200 Ω，V=1.8 kV (此為BioRad 電轉儀推薦參數(shù)，也可按所用電轉儀推薦的參數(shù)操作），將電擊杯快速放入電轉槽中，電擊完成快速插入冰中。

5. 2分鐘后從冰中取出電擊杯，放室溫，加入700 μl不含抗生素的無菌S.O.C. 培養(yǎng)基（室溫），用1ml 槍吹吸電擊杯底部數(shù)次混勻后，轉移到50 ml離心管（BD Falcon 50 ml錐形離心管等），向離心管中補加S.O.C. 培養(yǎng)基至10 ml。37℃，225 rpm復蘇60分鐘。當質粒中含有不穩(wěn)定片段時，30℃培養(yǎng)可降低錯誤重組的概率，若轉化control pUC19計算轉化效率，則需37℃，225 rpm復蘇60分鐘

6. 5000 rpm離心一分鐘收菌，重懸后取100-200 μl涂布到含相應抗生素的S.O.C平板上（因菌量較大，若全部涂板請選用直徑15cm培養(yǎng)皿2-5個）。將平板倒置放于37℃培養(yǎng)箱過夜培養(yǎng)13-17小時或30℃培養(yǎng)箱過夜培養(yǎng)15-20小時。

Stbl2電轉感受態(tài)細胞

S.O.C 培養(yǎng)基配方      

    2% Tryptone                          

1.2%     Tryptone

2.4% Yeast Extract

4%        甘油

17mM   KH2PO4

72mM   K2HPO4

S.O.C. Medium is suitable for use in the final step of cell transformation to obtain maximal transformation efficiency of E. coli (Hanahan, 1983).

注意事項

1. 加入DNA時體積不應大于感受態(tài)體積的1/10。

2. 電擊感受態(tài)細胞加入電擊杯應避免產生氣泡，氣泡會增加弧光放電風險。

3. 當DNA不純或存在鹽，乙醇，蛋白及緩沖液等污染時，轉化效率急劇下降。

4. 電擊杯里的離子可增加溶液的電導，增大在含有細胞和DNA的溶液中產生電流和弧光放電的風險。

5. 若轉化大質?；蛳氆@得較高轉化效率，推薦使用高純質粒提取試劑盒提取質粒。質粒增大一倍，轉化效率下降一個數(shù)量級。

6. 對于連接產物轉化，部分公司的連接體系或重組體系(例如：Thermo，NEB公司的T4 連接酶系統(tǒng)，NEB，天根的50度反應重組系統(tǒng))可以直接與EPI300電擊感受態(tài)混合后電擊轉化，無需純化，但DNA濃度不能過高，盡量不超過100 ng/μl。過高濃度連接產物或過大體積連接產物會降低轉化效率，增加弧光放電的風險。

7. 混入質粒時應輕柔操作，吸取感受態(tài)細胞時避免用力過猛，以免剪切力過大損傷細胞膜，降低轉化效率。轉化高濃度的質?；蜻B接產物可相應減少終用于涂板的菌量。

8. 電轉感受態(tài)細胞盡量保存在-80℃以下，高于-80℃超期儲存會導致轉化效率會下降。